骨痹消对骨科疾病的疗效分析-骨科护理毕业论文
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关节软骨由细胞基质和软骨细胞构成，两者相互作用，相互依存。细胞基质大部分是水，其他部分主要由胶原和蛋白多糖组成，使关节面具有刚性和抗变形能力。胶原是关节软骨的主要成分和张力的决定性因素[3]。 蛋白多糖使关节软骨具有抵抗压力和分散负荷的能力。软骨细胞负责软骨基质的维持和产生，而且在一定程度上控制软骨基质的分布。因此对OA发病机制的研究应该从软骨细胞本身开始。目前研究表明，关节软骨的形态变化，退行性改变及破坏是其基本病变。胶原纤维的破坏是OA的一个重要表现，病变早期就有胶原的破坏。软骨退变，基质崩解，裂解产物包括炎性介质进入关节腔，某些抗原暴露使滑膜产生免疫反应，导致滑膜炎症，镜下多表现为滑膜的明显增生[4]。炎性滑膜分泌的细胞激活因子、蛋白酶和前列腺素等物质是加速软骨退变和诱发临床症状的重要因素。
1 材料和方法
1.1 实验动物
普通级日本大耳兔60只，雌雄随机，体重1.6～2.5kg，由辽宁医学院实验动物中心提供。
1.2 造模与分组
将60只大耳兔随机分为5组：正常组(A组)、模型组(B组)、塞来昔布组(C组)、骨痹消组(D组)、壮骨关节丸组(E组)，每组12只。饲养1周，除正常组12只兔外，其余4组用Okazaki等[1]介绍的伸膝制动法复制兔KOA模型。
1.3 药物制备
骨痹消：骨碎补、独活、寄生、秦艽、川芎、当归等，制成含生药0.5g/粒的胶囊，锦州市第二医院制剂室。
塞来昔布胶囊：辉瑞制药有限公司，批号：BK060658。
壮骨关节丸：三九医药股份有限公司，批号：0510271。
1.4 给药剂量及方法
从造模第1天开始经胃灌药，按动物与人每千克体重等效剂量折算系数计算给药量，给药至10周末。B组和A组：0.9%氯化钠注射液，2ml/Bid/d;C组：西乐葆，27.5mg/Bid/d;D组：骨痹消，344mg/Bid/d;E组：壮骨关节丸，825mg/Bid/d。
1.5 观察指标
将各组兔分别于固定后6、10周末分批处理。将兔空气栓塞致死，于冰块上打开膝关节腔，切取胫骨内髁2mm厚全层软骨，及膝关节前正中部分的滑膜组织，l0%中性福尔马林固定，脱水、石蜡包埋、切片。
1.6 统计学处理
实验数据采用SPSS 13.0软件进行统计处理，实验结果以均数加减标准差(±s)表示，多组间差异显著性检验用单因素方差分析，各处理组与对照组比较用Dunnett t检验。
2 实验结果
2.1 造模后动物一般情况
B组造模后第16天死亡1只，C组第21天死亡，可能与动物撕咬、组织感染未能控制有关。
2.2 各组兔6w关节软骨光镜下组织形态学观察(HE×400)
模型组：细胞排列紊乱，簇集，肿胀，有核固缩，胞内成份减少，胶原轻度纤维变性(图1)。骨痹消组：细胞排列轻度紊乱，基质嗜碱性减弱，胞核固缩，细胞内成份减少(图2)。
各组兔10w关节软骨光镜下组织形态学观察
模型组：细胞排列紊乱，簇集，肿胀，核固缩，可见核溶解，基质染色不均，淡染，胶原纤维明显(图3)。骨痹消组：细胞排列基本正常，基质嗜碱性减弱，胞核轻度固缩(图4)。
2.4 各组兔10w时各组关节软骨病理学变化评分比较
D组在表层缺损、糜烂或溃疡、表面脆裂、裂纹、软骨下骨暴露、细胞成簇及软骨细胞缺失的病变积分低于B组，分别与之比较，差异均有非常显著性意义(P<0.01 )，而在糜烂或溃疡、表面脆裂及软骨细胞缺失的方面与C组比较，病变积分较低，差异有显著性意义(P<0.05 )，在细胞成簇病理表现的积分与C组相比较，其值较低，两组间比较，差异有非常显著性意义(P<0.01 );在病理评分总分方面，C、D、E组积分值均低于B组。其中， D、E组分别与B组比较，差异有非常显著性意义(P<0.01)，见表2。表2 10w各组关节软骨病理学变化评分比较注：与模型组相比：# P <0.05，## P<0.01;与塞来昔布组相比：* P<0.05，** P<0.01。
2.5 各组兔6w关节滑膜光镜下组织形态学观察(HE×400)
模型组：滑膜上皮增生，细胞间可见大量淋巴细胞、浆细胞浸润，滑膜下大量血管浸入(图5)。骨痹消组：滑膜上皮轻度增生，少量炎性细胞浸润，局部见少量肉芽组织增生(图6)。注：黑色箭头所指为淋巴细胞，红色箭头所指为浆细胞。
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关节软骨由细胞基质和软骨细胞构成，两者相互作用，相互依存。细胞基质大部分是水，其他部分主要由胶原和蛋白多糖组成，使关节面具有刚性和抗变形能力。胶原是关节软骨的主要成分和张力的决定性因素[3]。 蛋白多糖使关节软骨具有抵抗压力和分散负荷的能力。软骨细胞负责软骨基质的维持和产生，而且在一定程度上控制软骨基质的分布。因此对OA发病机制的研究应该从软骨细胞本身开始。目前研究表明，关节软骨的形态变化，退行性改变及破坏是其基本病变。胶原纤维的破坏是OA的一个重要表现，病变早期就有胶原的破坏。软骨退变，基质崩解，裂解产物包括炎性介质进入关节腔，某些抗原暴露使滑膜产生免疫反应，导致滑膜炎症，镜下多表现为滑膜的明显增生[4]。炎性滑膜分泌的细胞激活因子、蛋白酶和前列腺素等物质是加速软骨退变和诱发临床症状的重要因素。
1 材料和方法
1.1 实验动物
普通级日本大耳兔60只，雌雄随机，体重1.6～2.5kg，由辽宁医学院实验动物中心提供。
1.2 造模与分组
将60只大耳兔随机分为5组：正常组(A组)、模型组(B组)、塞来昔布组(C组)、骨痹消组(D组)、壮骨关节丸组(E组)，每组12只。饲养1周，除正常组12只兔外，其余4组用Okazaki等[1]介绍的伸膝制动法复制兔KOA模型。
1.3 药物制备
骨痹消：骨碎补、独活、寄生、秦艽、川芎、当归等，制成含生药0.5g/粒的胶囊，锦州市第二医院制剂室。
塞来昔布胶囊：辉瑞制药有限公司，批号：BK060658。
壮骨关节丸：三九医药股份有限公司，批号：0510271。
1.4 给药剂量及方法
从造模第1天开始经胃灌药，按动物与人每千克体重等效剂量折算系数计算给药量，给药至10周末。B组和A组：0.9%氯化钠注射液，2ml/Bid/d;C组：西乐葆，27.5mg/Bid/d;D组：骨痹消，344mg/Bid/d;E组：壮骨关节丸，825mg/Bid/d。
1.5 观察指标
将各组兔分别于固定后6、10周末分批处理。将兔空气栓塞致死，于冰块上打开膝关节腔，切取胫骨内髁2mm厚全层软骨，及膝关节前正中部分的滑膜组织，l0%中性福尔马林固定，脱水、石蜡包埋、切片。
1.6 统计学处理
实验数据采用SPSS 13.0软件进行统计处理，实验结果以均数加减标准差(±s)表示，多组间差异显著性检验用单因素方差分析，各处理组与对照组比较用Dunnett t检验。
2 实验结果
2.1 造模后动物一般情况
B组造模后第16天死亡1只，C组第21天死亡，可能与动物撕咬、组织感染未能控制有关。
2.2 各组兔6w关节软骨光镜下组织形态学观察(HE×400)
模型组：细胞排列紊乱，簇集，肿胀，有核固缩，胞内成份减少，胶原轻度纤维变性(图1)。骨痹消组：细胞排列轻度紊乱，基质嗜碱性减弱，胞核固缩，细胞内成份减少(图2)。
各组兔10w关节软骨光镜下组织形态学观察
模型组：细胞排列紊乱，簇集，肿胀，核固缩，可见核溶解，基质染色不均，淡染，胶原纤维明显(图3)。骨痹消组：细胞排列基本正常，基质嗜碱性减弱，胞核轻度固缩(图4)。
2.4 各组兔10w时各组关节软骨病理学变化评分比较
D组在表层缺损、糜烂或溃疡、表面脆裂、裂纹、软骨下骨暴露、细胞成簇及软骨细胞缺失的病变积分低于B组，分别与之比较，差异均有非常显著性意义(P<0.01 )，而在糜烂或溃疡、表面脆裂及软骨细胞缺失的方面与C组比较，病变积分较低，差异有显著性意义(P<0.05 )，在细胞成簇病理表现的积分与C组相比较，其值较低，两组间比较，差异有非常显著性意义(P<0.01 );在病理评分总分方面，C、D、E组积分值均低于B组。其中， D、E组分别与B组比较，差异有非常显著性意义(P<0.01)，见表2。表2 10w各组关节软骨病理学变化评分比较注：与模型组相比：# P <0.05，## P<0.01;与塞来昔布组相比：* P<0.05，** P<0.01。
2.5 各组兔6w关节滑膜光镜下组织形态学观察(HE×400)
模型组：滑膜上皮增生，细胞间可见大量淋巴细胞、浆细胞浸润，滑膜下大量血管浸入(图5)。骨痹消组：滑膜上皮轻度增生，少量炎性细胞浸润，局部见少量肉芽组织增生(图6)。注：黑色箭头所指为淋巴细胞，红色箭头所指为浆细胞。
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