鳖甲治疗肝纤维化的药性活力研究-大专毕业护理论文
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肝纤维化是慢性肝病发展至肝硬化甚至原发性肝细胞癌的必经阶段，是各种慢性肝病的共同病理学基础[7]。在肝纤维化形成的过程中，肝星状细胞(HSC)的“持久化”激活和增殖是中心环节[8];阻抑激活的 HSC增殖和诱导促进 HSC凋亡是防治肝纤维化的重要措施[9]。在临床应用上，鳖甲为治疗肝纤维化的传统中药，但鳖甲含有蛋白质、多肽、氨基酸、多糖等物质，化学成分复杂，因而鳖甲的抗肝纤维化活性单体少见报道。本文在前期实验的基础上，采用葡聚糖凝胶G-15对鳖甲的活性部位Bj6进行分离，得到Bj61～Bj68共8个组分，再采用MTT比色法确定Bj66、Bj67具有明显抑制大鼠肝星状细胞系HSC-T6的增殖作用，即为鳖甲的抗肝纤维化活性组分;该活性组分的化学成分比Bj6少许多，就可以通过制备高效液相色谱分离得到单体，为下一步筛选活性单体打下坚实的基础。
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1 对象 大鼠肝星状细胞系(HSC-T6)由浙江大学附属第一医院肝病研究所提供。
1.1.2 试验药物及主要试剂 (1)试验药物：鳖甲(醋制品)由浙江衢化医院提供，粉碎后过80目筛。(2)细胞培养试剂：胰蛋白酶(trypsin)、非必需氨基酸(NEAA)、 High-DMEM培养基，GIBCO产品 ;胎牛血清，武汉三利生物技术有限公司产品;青霉素、链霉素，华北制药股份公司产品;二氧化碳(CO2)，武汉市明辉气体科技有限公司。(3)细胞增殖用试剂：二甲基亚砜 (DMSO)、噻唑蓝 (MTT)，武汉凌飞科技有限公司。(4) 葡聚糖凝胶G-25、葡聚糖凝胶G-15:北京慧得易公司。
1.1.3 仪器 CO2培养箱，日本 SANYO公司产品;全自动酶标仪，美国 Bio-Rad公司产品;倒置相差显微镜，日本Olympus公司产品;洁净工作台，上海博迅医疗设备厂产品。
1.2 试验方法
1.2.1 鳖甲透析物干燥粉末的制备 精密称取鳖甲粉末100g，加200ml双蒸水超声提取20min，抽滤，残渣加水100ml超声10min，抽滤，合并滤液，冷冻干燥得冻干粉。再用少量水将冻干粉溶解，装于透析膜内，用100ml水于4℃透析5h，透析2次，合并膜外溶液，冷冻干燥。最后得鳖甲干燥粉末为淡黄色絮状粉末，即为鳖甲的抗肝纤维化活性肽类物质[5](M<6000)。
1.2.2 鳖甲抗肝纤维化活性部位不同组分的分离 称取50g葡聚糖凝胶G-25(Sephadex G-25)，加入过量双蒸水，加热溶胀约2h，放置冷却至室温，装柱。取0.3653g醋鳖甲透析物干燥粉末，用双蒸馏水8ml溶解，加入色谱柱上端，用蒸馏水洗脱，收集流分，每份10ml，共收集8个流分，即将鳖甲抗肝纤维化活性肽类物质分离为8个部位，分别记录为Bj1～Bj8，其中Bj4、Bj6和Bj7为活性部位[6]。再称取70g葡聚糖凝胶G-15(Sephadex G-15)，加入过量双蒸水，加热溶胀约2h，放置冷却至室温，装柱。取0.4012g Bj6样品，用双蒸馏水5ml溶解，加入色谱柱上端，用蒸馏水洗脱，收集流分，每份10ml，共收集8个流分，即将鳖甲抗肝纤维化活性部位Bj6分离为8个组分。提取分离流程见图1。
1.2.3 MTT比色法测定 HSC增殖 传代 HSC-T6细胞按 1×105的密度接种于 96孔培养板，每孔加 100μl，细胞贴壁长满孔底12h后，换用 5%FCS的DMEM培养基，培养12h后，分别加入高、中、低剂量Bj61～Bj68 (以含 5%FCS的 DMEM 培养基倍比稀释成16、8、4mg/ml，用0.45μm滤膜过滤)，4孔重复，另设空白对照组(含5%FCS的DMEM培养基)。培养72h后，去培养基(翻板)，每孔加20μl MTT溶液。孵育4h，每孔加入 DMSO 100μl，在微型混合器上振荡 2min，10min后于酶标仪上0D490值，再按下式计算抑制率：抑制率=(1-药物组OD值 对照组OD值)×100%
2 试验结果
传代培养的大鼠肝星状细胞系HSC-T6与不同浓度Bj61～Bj68样品共同培养 72h后,采用 MTT比色法测定各浓度HSC-T6增殖情况。与空白对照组相比，样品Bj66、Bj67在各浓度对HSC-T6细胞均有抑制作用，其中高、中浓度差异均有显著性(P<0.05)。结果见表1。表1 鳖甲Bj61～Bj68对HSC-T6细胞增殖的抑制作用.
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肝纤维化是慢性肝病发展至肝硬化甚至原发性肝细胞癌的必经阶段，是各种慢性肝病的共同病理学基础[7]。在肝纤维化形成的过程中，肝星状细胞(HSC)的“持久化”激活和增殖是中心环节[8];阻抑激活的 HSC增殖和诱导促进 HSC凋亡是防治肝纤维化的重要措施[9]。在临床应用上，鳖甲为治疗肝纤维化的传统中药，但鳖甲含有蛋白质、多肽、氨基酸、多糖等物质，化学成分复杂，因而鳖甲的抗肝纤维化活性单体少见报道。本文在前期实验的基础上，采用葡聚糖凝胶G-15对鳖甲的活性部位Bj6进行分离，得到Bj61～Bj68共8个组分，再采用MTT比色法确定Bj66、Bj67具有明显抑制大鼠肝星状细胞系HSC-T6的增殖作用，即为鳖甲的抗肝纤维化活性组分;该活性组分的化学成分比Bj6少许多，就可以通过制备高效液相色谱分离得到单体，为下一步筛选活性单体打下坚实的基础。
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1 对象 大鼠肝星状细胞系(HSC-T6)由浙江大学附属第一医院肝病研究所提供。
1.1.2 试验药物及主要试剂 (1)试验药物：鳖甲(醋制品)由浙江衢化医院提供，粉碎后过80目筛。(2)细胞培养试剂：胰蛋白酶(trypsin)、非必需氨基酸(NEAA)、 High-DMEM培养基，GIBCO产品 ;胎牛血清，武汉三利生物技术有限公司产品;青霉素、链霉素，华北制药股份公司产品;二氧化碳(CO2)，武汉市明辉气体科技有限公司。(3)细胞增殖用试剂：二甲基亚砜 (DMSO)、噻唑蓝 (MTT)，武汉凌飞科技有限公司。(4) 葡聚糖凝胶G-25、葡聚糖凝胶G-15:北京慧得易公司。
1.1.3 仪器 CO2培养箱，日本 SANYO公司产品;全自动酶标仪，美国 Bio-Rad公司产品;倒置相差显微镜，日本Olympus公司产品;洁净工作台，上海博迅医疗设备厂产品。
1.2 试验方法
1.2.1 鳖甲透析物干燥粉末的制备 精密称取鳖甲粉末100g，加200ml双蒸水超声提取20min，抽滤，残渣加水100ml超声10min，抽滤，合并滤液，冷冻干燥得冻干粉。再用少量水将冻干粉溶解，装于透析膜内，用100ml水于4℃透析5h，透析2次，合并膜外溶液，冷冻干燥。最后得鳖甲干燥粉末为淡黄色絮状粉末，即为鳖甲的抗肝纤维化活性肽类物质[5](M<6000)。
1.2.2 鳖甲抗肝纤维化活性部位不同组分的分离 称取50g葡聚糖凝胶G-25(Sephadex G-25)，加入过量双蒸水，加热溶胀约2h，放置冷却至室温，装柱。取0.3653g醋鳖甲透析物干燥粉末，用双蒸馏水8ml溶解，加入色谱柱上端，用蒸馏水洗脱，收集流分，每份10ml，共收集8个流分，即将鳖甲抗肝纤维化活性肽类物质分离为8个部位，分别记录为Bj1～Bj8，其中Bj4、Bj6和Bj7为活性部位[6]。再称取70g葡聚糖凝胶G-15(Sephadex G-15)，加入过量双蒸水，加热溶胀约2h，放置冷却至室温，装柱。取0.4012g Bj6样品，用双蒸馏水5ml溶解，加入色谱柱上端，用蒸馏水洗脱，收集流分，每份10ml，共收集8个流分，即将鳖甲抗肝纤维化活性部位Bj6分离为8个组分。提取分离流程见图1。
1.2.3 MTT比色法测定 HSC增殖 传代 HSC-T6细胞按 1×105的密度接种于 96孔培养板，每孔加 100μl，细胞贴壁长满孔底12h后，换用 5%FCS的DMEM培养基，培养12h后，分别加入高、中、低剂量Bj61～Bj68 (以含 5%FCS的 DMEM 培养基倍比稀释成16、8、4mg/ml，用0.45μm滤膜过滤)，4孔重复，另设空白对照组(含5%FCS的DMEM培养基)。培养72h后，去培养基(翻板)，每孔加20μl MTT溶液。孵育4h，每孔加入 DMSO 100μl，在微型混合器上振荡 2min，10min后于酶标仪上0D490值，再按下式计算抑制率：抑制率=(1-药物组OD值 对照组OD值)×100%
2 试验结果
传代培养的大鼠肝星状细胞系HSC-T6与不同浓度Bj61～Bj68样品共同培养 72h后,采用 MTT比色法测定各浓度HSC-T6增殖情况。与空白对照组相比，样品Bj66、Bj67在各浓度对HSC-T6细胞均有抑制作用，其中高、中浓度差异均有显著性(P<0.05)。结果见表1。表1 鳖甲Bj61～Bj68对HSC-T6细胞增殖的抑制作用.
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