盐酸黄连素的稳定性和药用性试验分析-护理研究口腔综述论文
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1 材料与仪器
1.1 材料
盐酸小檗碱(98%)购自西安飞达生物技术有限公司;海藻酸钠为化学纯(高粘度)购自广东西陇化工厂;可溶性淀粉(分析纯)购自国药化学试剂公司;其余试剂均为分析纯。
1.2 仪器
94-2恒温磁力搅拌器(上海梅颖浦仪器仪表制造有限公司)。Tu-1900型紫外分光光度计(北京普析通用仪器有限公司)。CFM-300荧光生物显微镜(上海长方光学仪器厂)。MRC1024型激光共聚焦显微镜(英国Bio-Rad公司)。
2 方法与结果
2.1 海藻酸钠/淀粉复合微球的制备
采用改进的乳化凝胶法,首先配置1.5%海藻酸钠(W/V)、1.5%淀粉(W/V)和1%盐酸小檗碱的20 ml混合水溶液,然后加入60 ml液体石蜡作为油相,2 ml司盘-80和吐温-80(9:1,V/V)作为乳化剂,搅拌形成乳液A。同样,配置6 ml质量浓度为8%的CaCl2溶液,加入20 ml液体石蜡和0.5 ml乳化剂后再加入2 ml乙醇搅拌得到乳液B。光学显微镜下观察均形成稳定乳液后将乳液B加入乳液A中进行交联反应。10 min后停止反应,离心分离得到微球,依次用醋酸乙酯、无水乙醇、去离子水进行洗涤,室温放置干燥。不加入盐酸小檗碱而其他条件相同以制备空白微球。
2.2 标准曲线的测定
2.2.1 测定吸收波长的选取
分别精密配置20 μg/ml的盐酸小檗碱水溶液和20 μg/ml的空白微球溶液,用紫外分光光度计在波长为200~700 nm处进行扫描,得到吸收曲线(见图1),盐酸小檗碱分别在波长为227,265和345 nm处有3个大的吸收峰,空白微球在波长超过330 nm后基本无吸收,为避免空白微球对药物浓度测定的影响,选取345 nm作为测定吸收波长。
2.3 微球包封率的测定和计算
取载药微球5 mg,用1%(W/V)EDTA溶液定容于100 ml容量瓶中。置于恒温振荡器中,在(37±0.5)℃下以150 r/min的转速振荡30 min后用移液管取5 ml上述溶液,在345 nm处采用紫外分光光度计测定吸光度,根据标准曲线得到浓度,计算药物含量,通过下式计算出包封率为82.1%。包封率(%)=(包裹于微球中的盐酸小檗碱含量 /投药量)×100%
2.4 微球在不同介质中的药物释放曲线分别含有500 ml pH7.4磷酸盐缓冲液(0.01 mol·l-1)和500 ml pH1.2盐酸溶液的两个600 ml烧杯置于恒温水浴振荡器中,在(37±0.5)℃以100 r/min的转速振荡。依次加入20 mg载药微球并记录时间,在设定的间隔时间点用移液管取出5 ml介质并随即加入等量的同种介质,用紫外分光光度计测定浓度,浓度换算成药物含量并对时间做曲线。见图2。
2.5 微球形态及药物分布
光学显微镜观察微球形态制备好的微球分散于去离子水中,超声处理2 min后,取1滴至载玻片上,盖上盖玻片,用荧光生物显微镜观察并拍照(见图3)。微球形态圆整,分散性好。激光共聚焦显微镜观察药物分布由于盐酸小檗碱有荧光性,而海藻酸钠和淀粉都没有荧光性,因而可以在激光共聚焦显微镜下观察盐酸小檗碱在复合微球内的分布状况,制备好的微球分散于去离子水中,超声1 min后取一滴置于盖玻片上,采用激发波长为488 nm的氩激发器,于激光共聚焦显微镜下观察,并拍照(见图4),药物被很好地包裹在复合微球内,且分布均匀。
海藻酸钠和淀粉都属于天然高分子材料,和人体相容性好,并具有来源广泛、价格便宜的优势。海藻酸钠可以被多价阳离子(如 Ca2+)交联形成“蛋格”结构[2]而瞬时凝胶化,反应条件温和,因而作为原料常被用来制备载药微球。复合微球通常被认为比单种材料制备的微球更具优势[3],由于淀粉和海藻酸钠结构类似,相容性好,用它们作为材料来制备复合载药微球,可以在保证对人体无毒害的条件下,实现药物缓控释,减少服药次数,降低药物的毒副作用,提高药物的稳定性和生物利用度。
口腔护理论文 http://www.qikanba.com/
1 材料与仪器
1.1 材料
盐酸小檗碱(98%)购自西安飞达生物技术有限公司;海藻酸钠为化学纯(高粘度)购自广东西陇化工厂;可溶性淀粉(分析纯)购自国药化学试剂公司;其余试剂均为分析纯。
1.2 仪器
94-2恒温磁力搅拌器(上海梅颖浦仪器仪表制造有限公司)。Tu-1900型紫外分光光度计(北京普析通用仪器有限公司)。CFM-300荧光生物显微镜(上海长方光学仪器厂)。MRC1024型激光共聚焦显微镜(英国Bio-Rad公司)。
2 方法与结果
2.1 海藻酸钠/淀粉复合微球的制备
采用改进的乳化凝胶法,首先配置1.5%海藻酸钠(W/V)、1.5%淀粉(W/V)和1%盐酸小檗碱的20 ml混合水溶液,然后加入60 ml液体石蜡作为油相,2 ml司盘-80和吐温-80(9:1,V/V)作为乳化剂,搅拌形成乳液A。同样,配置6 ml质量浓度为8%的CaCl2溶液,加入20 ml液体石蜡和0.5 ml乳化剂后再加入2 ml乙醇搅拌得到乳液B。光学显微镜下观察均形成稳定乳液后将乳液B加入乳液A中进行交联反应。10 min后停止反应,离心分离得到微球,依次用醋酸乙酯、无水乙醇、去离子水进行洗涤,室温放置干燥。不加入盐酸小檗碱而其他条件相同以制备空白微球。
2.2 标准曲线的测定
2.2.1 测定吸收波长的选取
分别精密配置20 μg/ml的盐酸小檗碱水溶液和20 μg/ml的空白微球溶液,用紫外分光光度计在波长为200~700 nm处进行扫描,得到吸收曲线(见图1),盐酸小檗碱分别在波长为227,265和345 nm处有3个大的吸收峰,空白微球在波长超过330 nm后基本无吸收,为避免空白微球对药物浓度测定的影响,选取345 nm作为测定吸收波长。
2.3 微球包封率的测定和计算
取载药微球5 mg,用1%(W/V)EDTA溶液定容于100 ml容量瓶中。置于恒温振荡器中,在(37±0.5)℃下以150 r/min的转速振荡30 min后用移液管取5 ml上述溶液,在345 nm处采用紫外分光光度计测定吸光度,根据标准曲线得到浓度,计算药物含量,通过下式计算出包封率为82.1%。包封率(%)=(包裹于微球中的盐酸小檗碱含量 /投药量)×100%
2.4 微球在不同介质中的药物释放曲线分别含有500 ml pH7.4磷酸盐缓冲液(0.01 mol·l-1)和500 ml pH1.2盐酸溶液的两个600 ml烧杯置于恒温水浴振荡器中,在(37±0.5)℃以100 r/min的转速振荡。依次加入20 mg载药微球并记录时间,在设定的间隔时间点用移液管取出5 ml介质并随即加入等量的同种介质,用紫外分光光度计测定浓度,浓度换算成药物含量并对时间做曲线。见图2。
2.5 微球形态及药物分布
光学显微镜观察微球形态制备好的微球分散于去离子水中,超声处理2 min后,取1滴至载玻片上,盖上盖玻片,用荧光生物显微镜观察并拍照(见图3)。微球形态圆整,分散性好。激光共聚焦显微镜观察药物分布由于盐酸小檗碱有荧光性,而海藻酸钠和淀粉都没有荧光性,因而可以在激光共聚焦显微镜下观察盐酸小檗碱在复合微球内的分布状况,制备好的微球分散于去离子水中,超声1 min后取一滴置于盖玻片上,采用激发波长为488 nm的氩激发器,于激光共聚焦显微镜下观察,并拍照(见图4),药物被很好地包裹在复合微球内,且分布均匀。
海藻酸钠和淀粉都属于天然高分子材料,和人体相容性好,并具有来源广泛、价格便宜的优势。海藻酸钠可以被多价阳离子(如 Ca2+)交联形成“蛋格”结构[2]而瞬时凝胶化,反应条件温和,因而作为原料常被用来制备载药微球。复合微球通常被认为比单种材料制备的微球更具优势[3],由于淀粉和海藻酸钠结构类似,相容性好,用它们作为材料来制备复合载药微球,可以在保证对人体无毒害的条件下,实现药物缓控释,减少服药次数,降低药物的毒副作用,提高药物的稳定性和生物利用度。
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