定眩合剂（DXHJ） 对椎基底动脉供血不足脑组织影响的观察-药学杂志核心期刊
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1 材料与仪器
1.1 动物健康青紫兰兔40 只 , 雌雄各半， 体质量（ 2.0±0.3） kg, 兔龄3～4 月， 合格证号：医动字号14-004,由兰州生物制品研究所实验动物室提供，附合一级实验动物质量标准。室温18～20℃，湿度65%～70%,实验前适应性喂养3 d后随机分为5组， 即空白组、模型组，西比灵组，定眩合剂高、低剂量组，每组8只。
1.2 药物及试剂定眩合剂由甘肃省中医院制剂室配制 （药物组方：岷当归，川芎，半夏，天麻，白术，茯苓，陈皮，钩藤，甘草） ； 西比灵由西安杨森制药有限公司生产，批号：20080109；消痔灵注射液由吉林省集安益盛药业股份有限公司生产，批号：080321；利多卡因，批号：0708022；胆固醇购自北京双旋生物培养基制品厂，批号：20070606。猪油，鸡蛋，白糖，市售，自备。NE，5-HT试剂盒购自美国ADL公司。
1.3 仪器经颅多普勒血流检测仪为美国卜ledasoraics TCD仪，探头频率2HzIz；日立高速低温冷冻离心机；722 s分光光度计，上海紧密科学仪器有限公司产品。
2 方法
2.1 造模方法参照成都中医药大学郑重等［2］的造模方法，用硬化剂（消痔灵与利多卡因按1∶1混合）10 ml，于家兔左侧C3～C5颈椎横突侧面，进针以感觉到横突边缘为准，回抽针栓无血、无气、无脑脊液，然后推注硬化剂，于7 d后重复注射一次。同时除空白组外其余各组高脂饲料喂养（高脂饲料由2%胆固醇、5%鲜蛋黄、3%白糖、10%猪油、80%基础饲料配制而成）［3］。6周内造模成功，以TCD检验造模成功。
2.2 给药方式将40只青紫兰兔随机分为5组，即空白组，模型组，西比灵组，定眩合剂高、低剂量组。西比灵组以西比灵1.2 mg/（kg·d），并以每千克体重10 ml蒸馏水稀释，制成混悬液灌胃；治疗组分别予定眩合剂低、高剂量［3.6 ，7.2 ml/（kg·d）］灌胃（本品每毫升含天麻以天麻素计，不得少于0.19 mg）；模型组同时灌胃以相应体积的生理盐水；空白组不予任何处理。此后，每周秤一次体重，根据体重调整给药量。
2.3 指标测定
2.3.1 脑组织单胺类神经递质的测定脑组织匀浆的制备：实验用家兔断头处死，迅速打开颅腔，在冰浴中迅速分离大脑脑干，放于硫酸纸上称重，将脑组织放入装有3 ml预冷生理盐水中，退去纸重求得脑组织的净量，按1∶30的比例补充生理盐水量制成组织匀浆，将组织匀浆倒入带塞离心管中，振荡5 min，然后4℃在3 000 r·min-1离心15 min，取上清液，2～8℃冰柜保存酶联免疫吸附法测定脑组织NE，5-HT含量。
2.3.2 血液流变学测定每组兔子在清醒状态下，心脏穿刺取血， 肝素抗凝。将5 ml 血液放入毛管式自动显示流变仪中操作， 观察5组动物全血粘度、血浆粘度与红细胞压积的变化。
2.4 统计学处理应用SPSS 10.0软件，实验所得数据均以±s表示，各组间两两比较采用F检验。
3 结果与分析
模型组脑组织内NE、5-HT含量与空白组比较明显降低（P<0.01）。应用定眩合剂后，低剂量治疗组兔脑组织内NE、5-HT含量无明显变化（P>0.05），高剂量组与模型组比较差异有显着性（ P<0. 05， P<0.01），随着定眩合剂治疗量的增加，高剂量组与小剂量组之间有差异（P<0.05），实验动物脑内NE，5-HT含量增高。
表2资料经统计学处理表明：模型组与空白组比较差异有显着统计学意义（P<0.01） ，提示模型组血黏度明显高于正常组；西比灵组与模型组比较差异无统计学意义（P>0.05） ，提示西比灵无降低血黏度作用；定眩合剂高剂量组与空白组比较差异无统计学意义（P>0.05） ，提示定眩合剂低、高剂量干预模型家兔后血黏度基本恢复至正常水平。
医学护理学期刊 http://www.qikanba.com/
1 材料与仪器
1.1 动物健康青紫兰兔40 只 , 雌雄各半， 体质量（ 2.0±0.3） kg, 兔龄3～4 月， 合格证号：医动字号14-004,由兰州生物制品研究所实验动物室提供，附合一级实验动物质量标准。室温18～20℃，湿度65%～70%,实验前适应性喂养3 d后随机分为5组， 即空白组、模型组，西比灵组，定眩合剂高、低剂量组，每组8只。
1.2 药物及试剂定眩合剂由甘肃省中医院制剂室配制 （药物组方：岷当归，川芎，半夏，天麻，白术，茯苓，陈皮，钩藤，甘草） ； 西比灵由西安杨森制药有限公司生产，批号：20080109；消痔灵注射液由吉林省集安益盛药业股份有限公司生产，批号：080321；利多卡因，批号：0708022；胆固醇购自北京双旋生物培养基制品厂，批号：20070606。猪油，鸡蛋，白糖，市售，自备。NE，5-HT试剂盒购自美国ADL公司。
1.3 仪器经颅多普勒血流检测仪为美国卜ledasoraics TCD仪，探头频率2HzIz；日立高速低温冷冻离心机；722 s分光光度计，上海紧密科学仪器有限公司产品。
2 方法
2.1 造模方法参照成都中医药大学郑重等［2］的造模方法，用硬化剂（消痔灵与利多卡因按1∶1混合）10 ml，于家兔左侧C3～C5颈椎横突侧面，进针以感觉到横突边缘为准，回抽针栓无血、无气、无脑脊液，然后推注硬化剂，于7 d后重复注射一次。同时除空白组外其余各组高脂饲料喂养（高脂饲料由2%胆固醇、5%鲜蛋黄、3%白糖、10%猪油、80%基础饲料配制而成）［3］。6周内造模成功，以TCD检验造模成功。
2.2 给药方式将40只青紫兰兔随机分为5组，即空白组，模型组，西比灵组，定眩合剂高、低剂量组。西比灵组以西比灵1.2 mg/（kg·d），并以每千克体重10 ml蒸馏水稀释，制成混悬液灌胃；治疗组分别予定眩合剂低、高剂量［3.6 ，7.2 ml/（kg·d）］灌胃（本品每毫升含天麻以天麻素计，不得少于0.19 mg）；模型组同时灌胃以相应体积的生理盐水；空白组不予任何处理。此后，每周秤一次体重，根据体重调整给药量。
2.3 指标测定
2.3.1 脑组织单胺类神经递质的测定脑组织匀浆的制备：实验用家兔断头处死，迅速打开颅腔，在冰浴中迅速分离大脑脑干，放于硫酸纸上称重，将脑组织放入装有3 ml预冷生理盐水中，退去纸重求得脑组织的净量，按1∶30的比例补充生理盐水量制成组织匀浆，将组织匀浆倒入带塞离心管中，振荡5 min，然后4℃在3 000 r·min-1离心15 min，取上清液，2～8℃冰柜保存酶联免疫吸附法测定脑组织NE，5-HT含量。
2.3.2 血液流变学测定每组兔子在清醒状态下，心脏穿刺取血， 肝素抗凝。将5 ml 血液放入毛管式自动显示流变仪中操作， 观察5组动物全血粘度、血浆粘度与红细胞压积的变化。
2.4 统计学处理应用SPSS 10.0软件，实验所得数据均以±s表示，各组间两两比较采用F检验。
3 结果与分析
模型组脑组织内NE、5-HT含量与空白组比较明显降低（P<0.01）。应用定眩合剂后，低剂量治疗组兔脑组织内NE、5-HT含量无明显变化（P>0.05），高剂量组与模型组比较差异有显着性（ P<0. 05， P<0.01），随着定眩合剂治疗量的增加，高剂量组与小剂量组之间有差异（P<0.05），实验动物脑内NE，5-HT含量增高。
表2资料经统计学处理表明：模型组与空白组比较差异有显着统计学意义（P<0.01） ，提示模型组血黏度明显高于正常组；西比灵组与模型组比较差异无统计学意义（P>0.05） ，提示西比灵无降低血黏度作用；定眩合剂高剂量组与空白组比较差异无统计学意义（P>0.05） ，提示定眩合剂低、高剂量干预模型家兔后血黏度基本恢复至正常水平。
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